干貨分享：細(xì)胞培養(yǎng)用液的配制與消毒

  一、器材與試劑：

  干粉型培養(yǎng)基、ydbm，qms、lms素.純凈水系統(tǒng)、電子天平、PH計(jì)、磁力攪拌器。

  具體步驟：

  (1)水的制備：

  細(xì)胞培養(yǎng)用水必須非常純凈，不含有離子和其他的雜質(zhì)。需要用新鮮的雙蒸水、三蒸水或純凈水.

  (2)PBS的制備與消毒(也可用于其它BSS，如：Hanks，D-Hanks液的配制)：

  1.溶解定容：將藥品(NaCl8.0g，KCl0.2g，Na2HPO4·H2O1.56g，KH2PO40.2g)倒入盛有雙蒸水的燒杯中，玻璃棒攪動，充分溶解，然后把溶液倒入容量瓶中準(zhǔn)確定容至1000ml，搖勻即成新配制的PBS溶液。

  2.移入溶液瓶內(nèi)待消毒：將PBS倒入溶液瓶(大的吊針瓶)內(nèi)，蓋上膠帽，并插上針頭放入高壓鍋內(nèi)8磅消毒20分鐘。注意高壓消毒后要用滅菌蒸餾水補(bǔ)充蒸發(fā)掉的水份。

  (3)胰蛋白酶溶液的配制與消毒：

  胰蛋白酶的作用是使細(xì)胞間的蛋白質(zhì)水解從而使細(xì)胞離散。不同的組織或者細(xì)胞對胰酶的作用反應(yīng)不一樣。胰酶分散細(xì)胞的活性還與其濃度、溫度和作用時(shí)間有關(guān)，在pH為8.0、溫度為37℃時(shí)，胰酶溶液的作用能力zui強(qiáng)。使用胰酶時(shí)，應(yīng)把握好濃度、溫度和時(shí)間，以免消化過度造成細(xì)胞損傷。因Ca2+、Mg2+和血清、蛋白質(zhì)克降低胰酶的活性，所以配制胰酶溶液時(shí)應(yīng)選用不含Ca2+、Mg2+的BSS，如：D-Hanks液。終止消化時(shí)，可用含有血清培養(yǎng)液或者胰酶抑制劑終止胰酶對細(xì)胞的作用。

  1.稱取胰蛋白酶：按胰蛋白酶液濃度為0.25%，用電子天平準(zhǔn)確稱取粉劑溶入小燒杯中的雙蒸水(若用雙蒸水需要調(diào)PH到7.2左右)或PBS(D-hanks)液中。攪拌混勻，置于4℃內(nèi)過夜。

  2.用注射濾器抽濾消毒：配好的胰酶溶液要在超凈臺內(nèi)用注射濾器(0.22微米微孔濾膜)抽濾除菌。然后分裝成小瓶于-20℃保存以備使用。

  (4)青、鏈霉素溶液的配制于消毒

  1.所用純凈水(雙蒸水)需要15磅高壓20分鐘滅菌。

  2.具體操作均在超凈臺內(nèi)完成。青霉素是80萬單位/瓶，用注射器加4ml滅菌雙蒸水。鏈霉素是100萬單位/瓶，加5ml滅菌雙蒸水，即每毫升各為20萬單位。

  3.使用時(shí)溶入培養(yǎng)液中，使青鏈霉素的濃度zui終為100單位/ml。1單位=1微克

  (5)RPMI1640的制備與消毒：

  1.溶解、調(diào)PH值、定容：先將培養(yǎng)基粉劑加入培養(yǎng)液體積2/3的雙蒸水中,并用雙蒸水沖洗包裝袋2-3次(沖洗液一并加入培養(yǎng)基中),充分?jǐn)嚢柚练蹌┤咳芙?并按照包裝說明添加一定的藥品.然后用注射器向培養(yǎng)基中加入配制好的青鏈霉素液各0.5ml,使青鏈霉素的濃度zui終各為100單位/ml。然后用一個(gè)當(dāng)量的鹽酸和NaOH調(diào)PH到7.2左右。zui后定容至1000ml，搖勻。

  2.安裝蔡式濾器：安裝時(shí)先裝好支架，按規(guī)定放好濾膜，用螺絲將不銹鋼濾器和支架連接好。然后卸下支架腿分別用布包好待消毒。

  3.抽濾：配制好的培養(yǎng)液通常用濾器過濾除菌。通常用蔡式濾器在超凈工作臺內(nèi)過濾。

  4.分裝：將過濾好的培養(yǎng)液分裝入小瓶內(nèi)置于4℃冰箱內(nèi)待用。

  5.使用前要向100ml培養(yǎng)液中加入1ml谷氨酰胺溶液(4℃時(shí)兩周有效)。

  (6)血清的滅活：

  細(xì)胞培養(yǎng)常用的是小牛血清，新買來的血清要在56℃水浴中滅活30分鐘后，再經(jīng)過抽濾方可加入培養(yǎng)基中使用。

  (7)HEPES溶液：

  HEPES的化學(xué)全稱位羥乙基呱嗪乙硫磺酸(N’-a-hydroxythylpiperazine-N’-ethanesulfanicacid)。對細(xì)胞性作用。它是一種氫離子緩沖劑，能較長時(shí)間控制恒定的pH范圍。使用終濃度為10-50mmol/L，一般培養(yǎng)液內(nèi)含20mmol/LHEPES即可達(dá)到緩沖能力。

  1mol/LHEPE緩沖液配制方法如下：

  準(zhǔn)確稱取HEPTS238.3g，加入新鮮三蒸水定容至1L。過濾除菌，分裝后4℃保存。

  注意：因?yàn)楝F(xiàn)在市售HEPES為約10g包裝的小瓶，所以可根據(jù)實(shí)際情況靈活配制，但是要保證培養(yǎng)液內(nèi)HEPES的終濃度仍然為20mmol/L。如：稱取4.766克HEPES溶于20ml三蒸水中，過濾除菌后可*(20ml)加入1L培養(yǎng)液中，或者每100ml培養(yǎng)液中加入2ml即可。

  (8)g氨酰胺：

  合成培養(yǎng)基中都含有較大量的ga酰胺，其作用非常重要，細(xì)胞需要g氨酰胺合成核酸和蛋白質(zhì)，g氨酰胺缺乏要導(dǎo)致細(xì)胞生長不良甚至死亡。在配制各種培養(yǎng)液中都應(yīng)該補(bǔ)加一定量的g氨酰胺。由于g氨酰胺在溶液中很不穩(wěn)定，4℃下放置1周可分解50%，故應(yīng)單獨(dú)配制，置于-20℃冰箱中保存，用前加入培養(yǎng)液。加有g(shù)氨酰胺的培養(yǎng)液在4℃冰箱中儲存2周以上時(shí)，應(yīng)重新加入原來的g氨酰胺。

  一般培養(yǎng)液中g(shù)氨酰胺的含量為1～4mmol/L。可以配制200mmol/Lg氨酰胺液貯存，用時(shí)加入培養(yǎng)液。配制方法為，g氨酰胺2.922g溶于三蒸水加至100ml即配成200mmol/L的溶液，充分?jǐn)嚢枞芙夂螅^濾除菌，分裝小瓶，-20℃保存，使用時(shí)可向100ml培養(yǎng)液中加入1mlg氨酰胺溶液。

  (9)肝素溶液的配制：

  含有肝素的培養(yǎng)液可以使內(nèi)皮細(xì)胞純度提高，肝素加入全培養(yǎng)液中zui終濃度為50ug/ml。因?yàn)楝F(xiàn)在市售的多為g素鈉，包裝為約為0.56克/瓶，配制時(shí)，可將其溶于100ml三蒸水中，定容，過夜，然后過濾除菌，分裝小瓶，保存溫度為--℃。使用時(shí)，向100ml培養(yǎng)液中加入1ml(可加入0.9ml)即可。

  (10)Ⅰ型膠原酶：

  0.1%Ⅰ型膠原m溶液同y蛋白酶一樣配制和消毒滅菌。注意：因?yàn)棰裥湍z原酶分子顆粒比胰酶大，不容易過濾，因此可以用蔡式濾器過濾除菌。分裝入10ml小瓶-20℃保存。

  (11)明膠溶液：

  因?yàn)槊髂z難于過濾，所以配制0.1%明膠溶液必須用無菌的PBS配制。所以制備過程中必須要注意無菌操作。首要的問題是如何無菌準(zhǔn)確稱量0.1克(配成100ml溶液)—即解決無菌分裝藥品的問題。其次要注意即使是0.1%的溶液，明膠也難溶，因此要充分搖勻，過夜放置，然后無菌分裝入50ml小瓶中，4℃保存。

  (12)其他培養(yǎng)用液的配制：

  20ug/ml內(nèi)皮生長因子，

  注意事項(xiàng)：

  1.配制溶液時(shí)必須用新鮮的蒸餾水。

  2.安裝蔡式濾器時(shí)通常使用孔徑0.45微米和0.22微米濾膜各一張，放置位置為0.45的位于0.22微米的濾膜上方，并且要特別注意濾膜光面朝上。

  3.配制RPMI1640培養(yǎng)基時(shí)因?yàn)檫€要加入小牛血清，而小牛血清略偏酸性，為了保證培養(yǎng)液PH值zui終為7.2，可在配制時(shí)調(diào)PH至7.4。

  五.細(xì)胞傳代培養(yǎng)(消化法)

  具體操作：

  (1)傳代前準(zhǔn)備：

  1.預(yù)熱培養(yǎng)用液：把已經(jīng)配制好的裝有培養(yǎng)液、PBS液和y蛋白酶的瓶子放入37℃水浴鍋內(nèi)預(yù)熱。

  2.用75%酒精擦拭經(jīng)過紫外線照射的超凈工作臺和雙手。

  3.正確擺放使用的器械：保證足夠的操作空間，不僅便于操作而且可減少污染。

  4.點(diǎn)燃酒精燈：注意火焰不能太小。

  5.準(zhǔn)備好將要使用的消毒后的空培養(yǎng)瓶，放入微波爐內(nèi)高火，8分鐘再次消毒。

  6.取出預(yù)熱好的培養(yǎng)用液：取出已經(jīng)預(yù)熱好的培養(yǎng)用液，用酒精棉球擦拭好后方能放入超凈臺內(nèi)。

  7.從培養(yǎng)箱內(nèi)取出細(xì)胞：注意取出細(xì)胞時(shí)要旋緊瓶蓋，用酒精棉球擦拭顯微鏡的臺面，再在鏡下觀察細(xì)胞。

  8.打開瓶口：將各瓶口一一打開，同時(shí)要在酒精燈上燒口消毒。

  (2)y蛋白酶消化;

  1.加入消化液：小心吸出舊培養(yǎng)液，用PBS清洗(沖洗)，加入適量消化液(y蛋白酶液)，注意消化液的量以蓋住細(xì)胞，*消化溫度是37℃。

  2.顯微鏡下觀察細(xì)胞：倒置顯微鏡下觀察消化細(xì)胞，若胞質(zhì)回縮，細(xì)胞之間不再連接成片，表明此時(shí)細(xì)胞消化適度。

  3.吸棄消化液加入培養(yǎng)液：棄去y蛋白酶液，注意換吸管，加入新鮮的培養(yǎng)液。

  (3)吹打分散細(xì)胞：

  1.吹打制懸：用滴管將已經(jīng)消化細(xì)胞吹打成細(xì)胞懸液。

  2.吸細(xì)胞懸液入離心管：將細(xì)胞懸液吸入10ml離心管中。

  3.平衡離心：平衡后將離心管放入臺式離心機(jī)中，以1000轉(zhuǎn)/分鐘離心6～8分鐘。

  4.棄上清液，加入新培養(yǎng)液：棄去上清液，加入2ml培養(yǎng)液，用滴管輕輕吹打細(xì)胞制成細(xì)胞懸液。

  (4)分裝稀釋細(xì)胞：

  1.分裝：將細(xì)胞懸液吸出分裝至2-3個(gè)培養(yǎng)瓶中，加入適量培養(yǎng)基旋緊瓶蓋。

  2.顯微鏡下觀察細(xì)胞：倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞量，必要是計(jì)數(shù)。注意密度過小會影響傳代細(xì)胞的生長，傳代細(xì)胞的密度應(yīng)該不低于5×105/ml。zui后要做好標(biāo)記。

  (5)繼續(xù)培養(yǎng)：

  用酒精棉球擦拭培養(yǎng)瓶，適當(dāng)旋松瓶蓋，放入CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。傳代細(xì)胞2小時(shí)后開始貼附在瓶壁上。當(dāng)生長細(xì)胞鋪展面積占培養(yǎng)瓶底面積25%時(shí)為一個(gè)+，占50%為++，占75%時(shí)為+++。

  傳代細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)：

  1.嚴(yán)格的無菌操作

  2.適度消化：消化的時(shí)間受消化液的種類、配制時(shí)間、加入培養(yǎng)瓶中的量等諸多因素的影響，消化過程中應(yīng)該注意培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)的變化，一旦胞質(zhì)回縮，連接變松散，或有成片浮起的跡象就要立即終止消化。

  附：EDTA(0.02%乙二胺四乙酸二鈉)消化液配方：

  EDTA0.20g，NaCl8.00g，KCl0.20g，KH2PO40.02g，葡萄糖2.00g，0.5%酚紅4ml，加入蒸餾水定容至1000ml。10磅20min高壓滅菌，使用時(shí)調(diào)節(jié)PH值到7.4。注意EDTA不能被血清中和，使用后培養(yǎng)瓶要*清洗，否則再培養(yǎng)時(shí)細(xì)胞容易脫壁。

  六.細(xì)胞的復(fù)蘇

  細(xì)胞復(fù)蘇的原則-快速融化：必須將凍存在-196℃液氮中的細(xì)胞快速融化至37℃，使細(xì)胞外凍存時(shí)的冰晶迅速融化，避免冰晶緩慢融化時(shí)進(jìn)入細(xì)胞形成再結(jié)晶，對細(xì)胞造成損害。

  具體操作

  (1)實(shí)驗(yàn)前準(zhǔn)備：

  1.將水浴鍋預(yù)熱至37℃

  2.用75%酒精擦拭紫外線照射30min的超凈工作臺臺面。

  3.在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養(yǎng)瓶等等。

  (2)取出凍存管：

  1.根據(jù)細(xì)胞凍存記錄按標(biāo)簽找到所需細(xì)胞的編號。

  2.從液氮罐中取出細(xì)胞盒，取出所需的細(xì)胞，同時(shí)核對管外的編號。

  (3)迅速解凍：

  1.迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱的水浴鍋中迅速解凍，并要不斷的搖動，使管中的液體迅速融化。

  2.約1-2min后凍存管內(nèi)液體*溶解，取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁，再拿入超凈臺內(nèi)。

  (4)平衡離心：

  用架盤天平平衡后，放入離心機(jī)中3000r/min離心3min

  (5)制備細(xì)胞懸液：

  1.吸棄上清液。

  2.向離心管內(nèi)加入10ml培養(yǎng)液，吹打制成細(xì)胞懸液。

  (6)細(xì)胞計(jì)數(shù)：

  細(xì)胞濃度以5×105/ml為宜。

  (7)培養(yǎng)細(xì)胞

  將復(fù)合細(xì)胞計(jì)數(shù)要求的細(xì)胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內(nèi)，將培養(yǎng)瓶放入37℃和5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)2-4小時(shí)(或者24-48小時(shí))后換液繼續(xù)培養(yǎng)培養(yǎng)，換液的時(shí)間由細(xì)胞情況而定。

  初學(xué)者易犯錯(cuò)誤：

  1水浴鍋未預(yù)熱或者未預(yù)熱到37℃。

  2.水浴鍋內(nèi)凍存管太多，導(dǎo)致傳熱不佳，使融化時(shí)間延長。

  3.離心前忘記平衡，導(dǎo)致離心機(jī)損壞和細(xì)胞丟失。

  4.一次復(fù)蘇細(xì)胞過多，忘記換吸頭和吸管，導(dǎo)致細(xì)胞交叉污染。

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