細胞復(fù)蘇實驗操作步驟，實驗人必看！
細胞復(fù)蘇的原則：慢凍速融，必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃，使細胞外凍存時的冰晶迅速融化，避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結(jié)晶，對細胞造成損害。
復(fù)蘇步驟
一.實驗前準(zhǔn)備：
將水浴鍋預(yù)熱至37℃。
細胞實驗室進行常規(guī)消毒，用75％酒精擦拭并且使用紫外線照射40min的超凈工作臺臺面。
在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養(yǎng)瓶等。
二．取出凍存管：
根據(jù)細胞凍存記錄按標(biāo)簽找到所需細胞的編號。
從液氮罐中取出細胞盒，取出所需的細胞，同時核對管外的編號。
三．迅速解凍：
迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱的水浴鍋中解凍，并要不斷地搖動，使管中的液體迅速融化。
約1-2min后凍存管內(nèi)液體完全溶解，取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁，再拿入超凈臺內(nèi)。
四.平衡離心：
用架盤天平平衡后，放入離心機中1000r/min，離心5min。
五.制備細胞懸液：
吸棄上清液。
向離心管內(nèi)加入10ml預(yù)熱的培養(yǎng)液，吹打制成細胞懸液。
用培養(yǎng)液懸液混懸沉淀細胞，調(diào)整細胞濃度，放培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
六.細胞計數(shù)：
細胞濃度以5×105/ml為宜。
七.培養(yǎng)細胞：
將符合細胞計數(shù)要求的細胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內(nèi)，將培養(yǎng)瓶放入37℃，5％CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)2-4小時（或者24-48小時）后換液繼續(xù)培養(yǎng)，換液的時間由細胞情況而定。
八. 記錄復(fù)蘇日期：
細胞凍存和復(fù)蘇是細胞培養(yǎng)技術(shù)里面容易出問題的部分，因此必須注意以下幾點~
注意無菌操作。
取細胞的過程中可能會接觸液氮，一定注意帶好防凍手套，護目鏡。
此項尤為重要，如果凍存管密封不嚴(yán)，細胞凍存管可能漏入液氮，解凍時，在水浴中搖晃，凍存管中的氣溫急劇上升，可導(dǎo)致爆炸，所以，一定要戴保護眼鏡和手套，復(fù)蘇過程中應(yīng)蓋上恒溫水浴鍋的蓋。
應(yīng)在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。如果復(fù)溫速度太慢，則會造成細胞損傷。另外，細胞復(fù)蘇后的操作Hao在4℃冰浴中進行，以減少冷凍保護劑對細胞的毒性。
細胞復(fù)蘇過程中，升溫的速率要大，把從液氮取出的細胞在短的時間內(nèi)放入水浴鍋。
離心前須加入少量培養(yǎng)液。細胞解凍后二甲基亞砜濃度較高，注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度，以減少對細胞的損傷。
細胞貼壁少的問題：教科書中說明凍存細胞解凍時1ml細胞液要加10ml－15ml培養(yǎng)液，經(jīng)驗總結(jié)，培養(yǎng)基越少細胞越容易貼附。
復(fù)蘇細胞分裝的問題：復(fù)蘇1管細胞一般根據(jù)情況可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中，分裝過多，細胞濃度過低，不利于細胞的貼壁。
加培養(yǎng)基的量放入問題：這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度，從如果加培養(yǎng)基的太少，DMSO的濃度就會比較大，就會影響細胞生長，從以前的資料來看，DMSO的濃度在小于0.5%的時候?qū)σ话慵毎麤]有什么影響。還有一個說法是1％。所以如果凍存液的濃度是10％DMSO，那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。
初學(xué)者易犯的錯誤：
水浴鍋未預(yù)熱或者未預(yù)熱到37℃直接融化。
水浴鍋內(nèi)凍存管太多，導(dǎo)致傳熱不佳，使融化時間延長。
離心前忘記平衡，導(dǎo)致離心機損壞和細胞丟失。
一次復(fù)蘇細胞種類過多，忘記換吸頭和吸管，導(dǎo)致細胞交叉污染。
解凍后的細胞要用和以前一樣的培養(yǎng)液和血清。因為每一種細胞都有自己特定的，并且已經(jīng)熟悉了的生長環(huán)境。突然使用不一樣的培養(yǎng)液和血清，會造成細胞生長不良，甚至死亡，像水土不服一樣。
結(jié)果分析：
判斷細胞復(fù)蘇成功與否，需要看復(fù)蘇后細胞貼壁率及細胞存活率（細胞存活率將凍存管內(nèi)剩余的細胞，用臺盼藍染色法檢測復(fù)蘇細胞的存活率。呈藍色的細胞為死細胞，活細胞不著色。用細胞計數(shù)板和計數(shù)器計數(shù)細胞，得出細胞存活率）。如果復(fù)蘇后95%以上的細胞貼壁，而且細胞的活性好，這就說明細胞復(fù)蘇的過程沒有問題。復(fù)蘇的細胞恢復(fù)到正常生長，達到正常的生長特性（比如細胞群體倍增時間等）后要再凍存以補充細胞儲存數(shù)量。
一.實驗前準(zhǔn)備：
將水浴鍋預(yù)熱至37℃。
細胞實驗室進行常規(guī)消毒，用75％酒精擦拭并且使用紫外線照射40min的超凈工作臺臺面。
在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養(yǎng)瓶等。
二．取出凍存管：
根據(jù)細胞凍存記錄按標(biāo)簽找到所需細胞的編號。
從液氮罐中取出細胞盒，取出所需的細胞，同時核對管外的編號。
三．迅速解凍：
迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱的水浴鍋中解凍，并要不斷地搖動，使管中的液體迅速融化。
約1-2min后凍存管內(nèi)液體完全溶解，取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁，再拿入超凈臺內(nèi)。
四.平衡離心：
用架盤天平平衡后，放入離心機中1000r/min，離心5min。
五.制備細胞懸液：
吸棄上清液。
向離心管內(nèi)加入10ml預(yù)熱的培養(yǎng)液，吹打制成細胞懸液。
用培養(yǎng)液懸液混懸沉淀細胞，調(diào)整細胞濃度，放培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
六.細胞計數(shù)：
細胞濃度以5×105/ml為宜。
七.培養(yǎng)細胞：
將符合細胞計數(shù)要求的細胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內(nèi)，將培養(yǎng)瓶放入37℃，5％CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)2-4小時（或者24-48小時）后換液繼續(xù)培養(yǎng)，換液的時間由細胞情況而定。
八. 記錄復(fù)蘇日期：
細胞凍存和復(fù)蘇是細胞培養(yǎng)技術(shù)里面容易出問題的部分，因此必須注意以下幾點~
注意無菌操作。
取細胞的過程中可能會接觸液氮，一定注意帶好防凍手套，護目鏡。
此項尤為重要，如果凍存管密封不嚴(yán)，細胞凍存管可能漏入液氮，解凍時，在水浴中搖晃，凍存管中的氣溫急劇上升，可導(dǎo)致爆炸，所以，一定要戴保護眼鏡和手套，復(fù)蘇過程中應(yīng)蓋上恒溫水浴鍋的蓋。
應(yīng)在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。如果復(fù)溫速度太慢，則會造成細胞損傷。另外，細胞復(fù)蘇后的操作Hao在4℃冰浴中進行，以減少冷凍保護劑對細胞的毒性。
細胞復(fù)蘇過程中，升溫的速率要大，把從液氮取出的細胞在短的時間內(nèi)放入水浴鍋。
離心前須加入少量培養(yǎng)液。細胞解凍后二甲基亞砜濃度較高，注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度，以減少對細胞的損傷。
細胞貼壁少的問題：教科書中說明凍存細胞解凍時1ml細胞液要加10ml－15ml培養(yǎng)液，經(jīng)驗總結(jié)，培養(yǎng)基越少細胞越容易貼附。
復(fù)蘇細胞分裝的問題：復(fù)蘇1管細胞一般根據(jù)情況可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中，分裝過多，細胞濃度過低，不利于細胞的貼壁。
加培養(yǎng)基的量放入問題：這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度，從如果加培養(yǎng)基的太少，DMSO的濃度就會比較大，就會影響細胞生長，從以前的資料來看，DMSO的濃度在小于0.5%的時候?qū)σ话慵毎麤]有什么影響。還有一個說法是1％。所以如果凍存液的濃度是10％DMSO，那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。
初學(xué)者易犯的錯誤：
水浴鍋未預(yù)熱或者未預(yù)熱到37℃直接融化。
水浴鍋內(nèi)凍存管太多，導(dǎo)致傳熱不佳，使融化時間延長。
離心前忘記平衡，導(dǎo)致離心機損壞和細胞丟失。
一次復(fù)蘇細胞種類過多，忘記換吸頭和吸管，導(dǎo)致細胞交叉污染。
解凍后的細胞要用和以前一樣的培養(yǎng)液和血清。因為每一種細胞都有自己特定的，并且已經(jīng)熟悉了的生長環(huán)境。突然使用不一樣的培養(yǎng)液和血清，會造成細胞生長不良，甚至死亡，像水土不服一樣。
結(jié)果分析：
判斷細胞復(fù)蘇成功與否，需要看復(fù)蘇后細胞貼壁率及細胞存活率（細胞存活率將凍存管內(nèi)剩余的細胞，用臺盼藍染色法檢測復(fù)蘇細胞的存活率。呈藍色的細胞為死細胞，活細胞不著色。用細胞計數(shù)板和計數(shù)器計數(shù)細胞，得出細胞存活率）。如果復(fù)蘇后95%以上的細胞貼壁，而且細胞的活性好，這就說明細胞復(fù)蘇的過程沒有問題。復(fù)蘇的細胞恢復(fù)到正常生長，達到正常的生長特性（比如細胞群體倍增時間等）后要再凍存以補充細胞儲存數(shù)量。
